viernes, 27 de marzo de 2009
Camara De Neubauer
Sangre
Recuento de eritrocitos
Recuento de eritrocitos: ejemplo
Observe que en la grilla de la cámara de Neubauer las áreas de recuento de eritrocitos y linfocitos son diferentes. Los glóbulos rojos se cuentan en las áreas coloreadas de rojo, mientras que los glóbulos blancos se cuentan en las áreas coloreadas de azul. Ten en cuenta que la grilla central tiene 25 cuadrados de 1mm x 1mm de área y 0.10 mm de profundidad. El factor de dilución es por tanto de 1:200. Convierte el número de glóbulos rojos contados en 5 cuadrados a nº glóbulos rojos/µl. (1 µl (microlitro) = 1 mm3 )
Como se hace?
La imagen de abajo simula el campo que esta viendo al microscopio con un objetivo de 45x. Solo es visible el centro de la grilla. Intenta verificar esto al ir moviendo el campo de derecha-izquierda y de arriba-abajo, como si de una pletina de microscopio se tratase. Cuenta los glóbulos rojos en los cinco cuadrados mencionados anteriormente y determina el recuento de eritrocitos como se ha descrito anteriormente..
Muy importante: Cuando un eritrocito se sitúa en mitad de las líneas superior y/o de la izquierda, entonces es contabilizado. Pero no se contabiliza cuando se sitúa en mitad de las líneas inferior y/o de la derecha..
El rango normal de recuento de glóbulos rojos es el siguiente:
Mujeres: 3.9-5.6 millones/µl
Hombres: 4.5-6.5 millones/µl
Determine el recuento del sujeto cuya muestra aparece en la imagen.
Cual es la solución?
Técnicas de estudio de líneas celulares
TÉCNICAS DE CONTAJE CELULAR
Una suspensión celular se caracteriza por presentar un número de partículas microscópicas dispersas en un fluido. Habitualmente será necesario determinar tanto la densidad de las células en la suspensión como el porcentaje de éstas que son viables.
Para determinar la densidad de las células se emplean diferentes técnicas, desde la relativamente simple cámara de contaje celular de la que existen numerosas variantes, entre ellas la que empleamos (cámara de Neubauer), hasta equipos automáticos de contaje celular como el "Cell Coulter" de la empresa Beckman-Coulter.
El principio del contador celular se basa en la medida de los cambios en la resistencia eléctrica que se producen cuando una partícula no conductora en suspensión en un electrolito atraviesa un pequeño orificio. Como se puede ver en el esquema, una pequeña abertura entre los electrodos es la zona sensible a través de la que pasan las partículas que se encuentran en suspensión. Cuando una partícula atraviesa el orificio desplaza su propio volumen de electrolito. El volumen desplazado es medido como un pulso de voltaje. La altura de cada pulso es proporcional al volumen de la partícula. controlando la cantidad de la suspensión que circula a través del orificio es posible contar y medir el tamaño de las partículas. Es posible contar y medir varios miles de partículas por segundo, independientemente de su forma, color y densidad.
En la unidad de Citometría de flujo y Microscopia Confocal de los Servicios Científico-Técnicos de la Universidad de Barcelona se dispone de contadores celulares.
Sin embargo, es posible determinar la densidad celular empleando métodos más sencillos. Nos basta con una cámara de contaje celular, por ej. la cámara de Neubauer, y un microscopio. Una cámara de contaje celular es un dispositivo en el que se coloca una muestra de la suspensión a medir. El dispositivo presenta unas señales que determinan un volumen conocido (x microlitros). Al contar bajo el microscopio el número de partículas presentes en ese volumen se puede determinar la densidad de partículas en la suspensión de origen.
La cámara de Neubauer es una cámara de contaje adaptada al microscopio de campo claro o al de contraste de fases. Se trata de un portaobjetos con una depresión en el centro, en el fondo de la cual se ha marcado con la ayuda de un diamante una cuadrícula como la que se ve en la imagen. Es un cuadrado de 3 x 3 mm, con una separación entre dos lineas consecutivas de 0.25 mm. Así pues el área sombreada y marcada L corresponde a 1 milimetro cuadrado. La depresión central del cubreobjetos está hundida 0.1 mm respecto a la superficie, de forma que cuando se cubre con un cubreobjetos éste dista de la superficie marcada 0.1 milímetro, y el volumen comprendido entre la superficie L y el cubreobjetos es de 0.1 milímetro cúbico, es decir 0.1 microlitro.
Si contamos las cuatro áreas sombreada (L) observando un total de x células entre las cuatro áreas, la concentración en la suspensión celular será :
concentración en la suspensión (células / mL) = 10000 (x/4)
En la imagen puedes observar el aspecto de una de las regiones marcadas como L y que en el microscopio se ven como una cuadrícula de 16 pequeños cuadrados de 0.25 milímetros de lado. Esta imagen ha sido tomada empleando un microscopio invertido de contraste de fases.
Existen numerosos modelos de cámaras de contaje celular adaptadas a su uso en microscopía. En la imagen puedes observar una cámara de Neubauer doble, como las que usas en el laboratorio de prácticas.
Para determinar la viabilidad celular se emplean diferentes métodos. El más común es el de tinción con azul tripán. El azul tripán es un coloide que se introduce en el interior de las células que presentan roturas en la membrana. Así pues las células que aparecen en la imagen, claramente de color azul, son consideradas no viables. Asimilar células blancas, por exclusión, a células viables es un error pues por este método se sobrevalora la viabilidad de las células en la suspensión, determinando como inviables sólo aquellas con la membrana rota. Existen otros métodos de determinación de la viabilidad celular como el más preciso de la tinción con ioduro de propidio
En la red dispones de descripciones detalladas sobre como utilizar un hemocitómetro, como la propuesta por P.J. Hansen, o la detallada descripción que aporta Beckton-Dickinson, y los problemas de cálculo de parámetros celulares que plantea empleando datos obtenidos a partir de un hemocitómetro, y otros protocolos para el contaje de células (en protocol-online)
- arriba -
________________________________________
Material docente diseñado y elaborado por Manuel Reina. Última actualización : . Comentarios : mreina@ub.edu
se aseptiza el dedo con alcohol y luego se seca al aire o con algodón. Se coge entre el pulgar y el índice y se hace una punción rápida y penetrante a través de la piel de la punta del dedo con una lanceta estéril.
2. Se deshecha la primera gota de sangre y se aspira la siguiente con la pipeta de dilución perfectamente limpia y seca hasta la señal 1 o 0.5 (también puede utilizarse la pipeta de hemoglobina, de 20 microlitros). Hay que evitar la entrada de burbujas de aire, pudiendo ayudarnos de un papel de filtro para conseguir el enrasado.
3. A continuación se toma con la pipeta líquido de Hayem, isotónico con la sangre, hasta la señal 1; así, la sangre queda diluida al 1/10, si tomamos sangre hasta la señal 1, o al 1/20 si tomamos hasta 0.5. Esto es así porque el volumen de la bola de la pipeta es 100 veces superior al del capilar de la misma. (Si hemos utilizado la pipeta de hemoglobina podemos diluir su contenido en 2 o 4 ml de líquido de Hayem para obtener diluciones 1/100 o 1/200).
4. Tomamos la pipeta (o el tubo de ensayo) entre los dedos índice y pulgar y agitamos. A través de la goma de conexión con la pipeta, soplamos para despreciar las primeras gotas por corresponder al líquido que estaba en el capilar.
5. Se adapta un cubreobjetos sobre una cámara cuentaglóbulos limpia y seca y se coloca una gota en uno de los lados del cubre; esta gota penetra por capilaridad y rellena el retículo de la misma.
6. Una vez preparada la cámara se coloca sobre la platina del microscopio dejándose unos minutos en reposo para que sedimenten los glóbulos. Disponemos el condensador bajo y luz débil; enfocamos primero con el objetivo débil seco y luego se cambia al fuerte seco para proceder al recuento, que se lleva a cabo en los cuadrados pequeños del retículo marcado en color rojo. Finalizado el recuento se procede a la limpieza de la pipeta con acético 1:3, agua destilada y alcohol-éter sucesivamente.
7.El volumen de sangre en el cual se han contado las células resulta de multiplicar la profundidad de la cámara por el factor de dilución, la superficie de los cuadrados y el número de cuadrados contados.
Con cámara de NEUBAUER: Superficie de 1 cuadrado grande (1/20 mm de lado):
Volumen de un cuadrado grande (1/10 mm de profundidad):
Si contamos "a" glóbulos rojos en "n" cuadrados pequeños, el número de glóbulos por cuadrado será a/n.
Si en un volumen 1/4000 mm3 hay a/n glóbulos rojos, en 1 mm3 habrá X. Luego:
siendo X el número de glóbulos rojos existentes por cada mm3 de sangre diluida.
Si la sangre se diluyó a 1/100 o 1/200, habrá que multiplicar el valor X por 100 o 200 respectivamente, con lo cual obtendremos un nuevo valor, Y, que representa el número de glóbulos rojos existentes por cada mm3 de sangre (sin diluir).
Se utilizan para calcular, mediante el uso del microscopio, el número de partículas (leucocitos, hematíes, bacterias…) por unidad de voluimen de un líquido.
La cámara está constituida por una placa base de vidrio especial pareciso a un porta, su parte central se encuentra separada de los extremos por unas ranuras. en ella se encuentran las cuadrículas de recuento.
La fórmula de contaje es: partículas/mm3= partículas contadas.
Clases de cámaras:
- Neubauer improved: Es el más utilizado (9 cuadros grandes, cada 1 de 1 mm2.)
- Neubauer: La diferencia es el cuadro grande central.
- Thoma: Se utiliza solo para el recuento de eritrocitos.
- Fuchs-Rosenthal: Se utiliza habitualmente para recuento de células en líquidos orgánicos (LCR, Líquido sinovial…)
Cámara de Neubauer
La Cámara de Neubauer es un instrumento utilizado en cultivo celular para realizar conteo de células en un medio de cultivo líquido. Consta de dos placas de vidrio, entre las cuales se puede alojar un volumen conocido de líquido. Una de las placas posee una grilla de dimensiones conocidas y que es visible al microscopio óptico.
Para contar las células de un cultivo líquido, se agrega una gota de este entre estas dos placas y observar al microscopio óptico la cantidad de células presentes en un campo determinado de la grilla.
En base a la cantidad de células contadas, conociendo el volumen de líquido que admite el campo de la grilla, se calcula la concentración de células por unidad de volumen de la solución de medio de cultivo inicial.
Recuento de eritrocitos
Recuento de eritrocitos: ejemplo
Observe que en la grilla de la cámara de Neubauer las áreas de recuento de eritrocitos y linfocitos son diferentes. Los glóbulos rojos se cuentan en las áreas coloreadas de rojo, mientras que los glóbulos blancos se cuentan en las áreas coloreadas de azul. Ten en cuenta que la grilla central tiene 25 cuadrados de 1mm x 1mm de área y 0.10 mm de profundidad. El factor de dilución es por tanto de 1:200. Convierte el número de glóbulos rojos contados en 5 cuadrados a nº glóbulos rojos/µl. (1 µl (microlitro) = 1 mm3 )
Como se hace?
La imagen de abajo simula el campo que esta viendo al microscopio con un objetivo de 45x. Solo es visible el centro de la grilla. Intenta verificar esto al ir moviendo el campo de derecha-izquierda y de arriba-abajo, como si de una pletina de microscopio se tratase. Cuenta los glóbulos rojos en los cinco cuadrados mencionados anteriormente y determina el recuento de eritrocitos como se ha descrito anteriormente..
Muy importante: Cuando un eritrocito se sitúa en mitad de las líneas superior y/o de la izquierda, entonces es contabilizado. Pero no se contabiliza cuando se sitúa en mitad de las líneas inferior y/o de la derecha..
El rango normal de recuento de glóbulos rojos es el siguiente:
Mujeres: 3.9-5.6 millones/µl
Hombres: 4.5-6.5 millones/µl
Determine el recuento del sujeto cuya muestra aparece en la imagen.
Cual es la solución?
Técnicas de estudio de líneas celulares
TÉCNICAS DE CONTAJE CELULAR
Una suspensión celular se caracteriza por presentar un número de partículas microscópicas dispersas en un fluido. Habitualmente será necesario determinar tanto la densidad de las células en la suspensión como el porcentaje de éstas que son viables.
Para determinar la densidad de las células se emplean diferentes técnicas, desde la relativamente simple cámara de contaje celular de la que existen numerosas variantes, entre ellas la que empleamos (cámara de Neubauer), hasta equipos automáticos de contaje celular como el "Cell Coulter" de la empresa Beckman-Coulter.
El principio del contador celular se basa en la medida de los cambios en la resistencia eléctrica que se producen cuando una partícula no conductora en suspensión en un electrolito atraviesa un pequeño orificio. Como se puede ver en el esquema, una pequeña abertura entre los electrodos es la zona sensible a través de la que pasan las partículas que se encuentran en suspensión. Cuando una partícula atraviesa el orificio desplaza su propio volumen de electrolito. El volumen desplazado es medido como un pulso de voltaje. La altura de cada pulso es proporcional al volumen de la partícula. controlando la cantidad de la suspensión que circula a través del orificio es posible contar y medir el tamaño de las partículas. Es posible contar y medir varios miles de partículas por segundo, independientemente de su forma, color y densidad.
En la unidad de Citometría de flujo y Microscopia Confocal de los Servicios Científico-Técnicos de la Universidad de Barcelona se dispone de contadores celulares.
Sin embargo, es posible determinar la densidad celular empleando métodos más sencillos. Nos basta con una cámara de contaje celular, por ej. la cámara de Neubauer, y un microscopio. Una cámara de contaje celular es un dispositivo en el que se coloca una muestra de la suspensión a medir. El dispositivo presenta unas señales que determinan un volumen conocido (x microlitros). Al contar bajo el microscopio el número de partículas presentes en ese volumen se puede determinar la densidad de partículas en la suspensión de origen.
La cámara de Neubauer es una cámara de contaje adaptada al microscopio de campo claro o al de contraste de fases. Se trata de un portaobjetos con una depresión en el centro, en el fondo de la cual se ha marcado con la ayuda de un diamante una cuadrícula como la que se ve en la imagen. Es un cuadrado de 3 x 3 mm, con una separación entre dos lineas consecutivas de 0.25 mm. Así pues el área sombreada y marcada L corresponde a 1 milimetro cuadrado. La depresión central del cubreobjetos está hundida 0.1 mm respecto a la superficie, de forma que cuando se cubre con un cubreobjetos éste dista de la superficie marcada 0.1 milímetro, y el volumen comprendido entre la superficie L y el cubreobjetos es de 0.1 milímetro cúbico, es decir 0.1 microlitro.
Si contamos las cuatro áreas sombreada (L) observando un total de x células entre las cuatro áreas, la concentración en la suspensión celular será :
concentración en la suspensión (células / mL) = 10000 (x/4)
En la imagen puedes observar el aspecto de una de las regiones marcadas como L y que en el microscopio se ven como una cuadrícula de 16 pequeños cuadrados de 0.25 milímetros de lado. Esta imagen ha sido tomada empleando un microscopio invertido de contraste de fases.
Existen numerosos modelos de cámaras de contaje celular adaptadas a su uso en microscopía. En la imagen puedes observar una cámara de Neubauer doble, como las que usas en el laboratorio de prácticas.
Para determinar la viabilidad celular se emplean diferentes métodos. El más común es el de tinción con azul tripán. El azul tripán es un coloide que se introduce en el interior de las células que presentan roturas en la membrana. Así pues las células que aparecen en la imagen, claramente de color azul, son consideradas no viables. Asimilar células blancas, por exclusión, a células viables es un error pues por este método se sobrevalora la viabilidad de las células en la suspensión, determinando como inviables sólo aquellas con la membrana rota. Existen otros métodos de determinación de la viabilidad celular como el más preciso de la tinción con ioduro de propidio
En la red dispones de descripciones detalladas sobre como utilizar un hemocitómetro, como la propuesta por P.J. Hansen, o la detallada descripción que aporta Beckton-Dickinson, y los problemas de cálculo de parámetros celulares que plantea empleando datos obtenidos a partir de un hemocitómetro, y otros protocolos para el contaje de células (en protocol-online)
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Material docente diseñado y elaborado por Manuel Reina. Última actualización : . Comentarios : mreina@ub.edu
se aseptiza el dedo con alcohol y luego se seca al aire o con algodón. Se coge entre el pulgar y el índice y se hace una punción rápida y penetrante a través de la piel de la punta del dedo con una lanceta estéril.
2. Se deshecha la primera gota de sangre y se aspira la siguiente con la pipeta de dilución perfectamente limpia y seca hasta la señal 1 o 0.5 (también puede utilizarse la pipeta de hemoglobina, de 20 microlitros). Hay que evitar la entrada de burbujas de aire, pudiendo ayudarnos de un papel de filtro para conseguir el enrasado.
3. A continuación se toma con la pipeta líquido de Hayem, isotónico con la sangre, hasta la señal 1; así, la sangre queda diluida al 1/10, si tomamos sangre hasta la señal 1, o al 1/20 si tomamos hasta 0.5. Esto es así porque el volumen de la bola de la pipeta es 100 veces superior al del capilar de la misma. (Si hemos utilizado la pipeta de hemoglobina podemos diluir su contenido en 2 o 4 ml de líquido de Hayem para obtener diluciones 1/100 o 1/200).
4. Tomamos la pipeta (o el tubo de ensayo) entre los dedos índice y pulgar y agitamos. A través de la goma de conexión con la pipeta, soplamos para despreciar las primeras gotas por corresponder al líquido que estaba en el capilar.
5. Se adapta un cubreobjetos sobre una cámara cuentaglóbulos limpia y seca y se coloca una gota en uno de los lados del cubre; esta gota penetra por capilaridad y rellena el retículo de la misma.
6. Una vez preparada la cámara se coloca sobre la platina del microscopio dejándose unos minutos en reposo para que sedimenten los glóbulos. Disponemos el condensador bajo y luz débil; enfocamos primero con el objetivo débil seco y luego se cambia al fuerte seco para proceder al recuento, que se lleva a cabo en los cuadrados pequeños del retículo marcado en color rojo. Finalizado el recuento se procede a la limpieza de la pipeta con acético 1:3, agua destilada y alcohol-éter sucesivamente.
7.El volumen de sangre en el cual se han contado las células resulta de multiplicar la profundidad de la cámara por el factor de dilución, la superficie de los cuadrados y el número de cuadrados contados.
Con cámara de NEUBAUER: Superficie de 1 cuadrado grande (1/20 mm de lado):
Volumen de un cuadrado grande (1/10 mm de profundidad):
Si contamos "a" glóbulos rojos en "n" cuadrados pequeños, el número de glóbulos por cuadrado será a/n.
Si en un volumen 1/4000 mm3 hay a/n glóbulos rojos, en 1 mm3 habrá X. Luego:
siendo X el número de glóbulos rojos existentes por cada mm3 de sangre diluida.
Si la sangre se diluyó a 1/100 o 1/200, habrá que multiplicar el valor X por 100 o 200 respectivamente, con lo cual obtendremos un nuevo valor, Y, que representa el número de glóbulos rojos existentes por cada mm3 de sangre (sin diluir).
Se utilizan para calcular, mediante el uso del microscopio, el número de partículas (leucocitos, hematíes, bacterias…) por unidad de voluimen de un líquido.
La cámara está constituida por una placa base de vidrio especial pareciso a un porta, su parte central se encuentra separada de los extremos por unas ranuras. en ella se encuentran las cuadrículas de recuento.
La fórmula de contaje es: partículas/mm3= partículas contadas.
Clases de cámaras:
- Neubauer improved: Es el más utilizado (9 cuadros grandes, cada 1 de 1 mm2.)
- Neubauer: La diferencia es el cuadro grande central.
- Thoma: Se utiliza solo para el recuento de eritrocitos.
- Fuchs-Rosenthal: Se utiliza habitualmente para recuento de células en líquidos orgánicos (LCR, Líquido sinovial…)
Cámara de Neubauer
La Cámara de Neubauer es un instrumento utilizado en cultivo celular para realizar conteo de células en un medio de cultivo líquido. Consta de dos placas de vidrio, entre las cuales se puede alojar un volumen conocido de líquido. Una de las placas posee una grilla de dimensiones conocidas y que es visible al microscopio óptico.
Para contar las células de un cultivo líquido, se agrega una gota de este entre estas dos placas y observar al microscopio óptico la cantidad de células presentes en un campo determinado de la grilla.
En base a la cantidad de células contadas, conociendo el volumen de líquido que admite el campo de la grilla, se calcula la concentración de células por unidad de volumen de la solución de medio de cultivo inicial.
PRACTICA 2 PESOS Y MEDIDAS UNIDAD 2
C.B.T.I.S. NO 155
PRACTICA 2
PESOS Y MEDIDAS
MESA:
3
Alumna:
Flores Hernández Cynthia Giselle
Maestro:
Víctor Manuel Alfaro López
Grupo:
2L2M
Materia:
Operar Equipo Y Material Del Laboratorio
Fecha:
24 De Marzo Del 2009
INDICE
1 Introducción
2 Objetivo
3 Instrucciones
4 Materiales
5 Desarrollo
6 Conclusión
INTRODUCCION
Esta práctica nos sirvió para poder manejar las medidas de los instrumentos como la balanza todo esto nos ayudo a saber cómo utilizar los milímetros de una pipeta pauster todo esto nos ayudo a mejorar nuestro desempeño como técnicos laboratoristas de la escuela y por eso en la 2 practica de pesos y medidas de los múltiplos y submúltiplos.
En esta práctica haremos las mediciones de los instrumentos de cristalería en la balanza de nuevo los mediremos pero con agua corriente el agua destilada por ultimo las pesamos con el cultivo que es sal y harina para saber que tanto subió en gramos
OBJETIVO
Aplicamos esta práctica para saber el volumen o peso de cada material de cristalería que el maestro nos presto ya sea con algún cultivo como el que manejamos sal y harina o solo.
Esta práctica nos ayudo a mejorar mejor las medidas de los instrumentos como la balanza y otros más. Ya sea que utilicemos mililitros, gramos, micro litros y etc.
INSTRUCCIONES
1 Materiales
2 Equipo de bioseguridad
3 Procedimiento: peso de materiales (masa):con una balanza gran ataría, realiza en el salón en el peso de los materiales que se facilitan, registrando el peso de cada elemento en forma ordenada. Solicitar agua destilada
4 Medicino de líquidos con pipetas: se debe de solicitar
5 tubos de ensayos pero solo nos dieron 2, 1 tapón para la pipeta de pauster, introducir la punta de la pipeta en el vaso de precipitado que contiene el liquido.
5 Succione hasta que el líquido hacienda hasta arriba de la marca superior solicitada.
6 Para verificar las gotas correspondientes a 1 ml. Debe utilizar una pipeta pastear.
7 Solicitar un vidrio de reloj para llevar a cabo el peso de 1 ml. De agua destilada y compáralo con la de agua corriente.
8 Realizar la succión del pipeteo con la boca si es agua.
9 Controle la descarga del liquido en el interior de la pipeta con el dedo observar la posición del menisco que se forma para saber si ya está la cantidad exacta.
10 Realizar 5 determinaciones con pipetas de diferentes capacidades. Lave los instrumentos y enjuague con agua corriente y destilada y colocarla en 1 gradilla.
11 guardas los instrumentos limpiarlos y limpiar la mesa y subir las sillas.
MATERIALES
1 Balanza Granataria
2 Vidrio De Reloj
3 Vaso De Precipitado De 500ml.
4 Vaso De Precipitado de 50ml.
5 Probeta Volumétrica
6 Cristalizador
7 Portaobjetos
8 Pipeta Pauster
9 Pipeta Volumetrica De 5 ml.
10 Tapón
11 Gradilla De Metal
12 Cubreobjetos
13 Espátula
14 Caja De Preti De Plástico
15 Tubo De Ensayo
DESARROLLO
En esta práctica numero 2 de pesos y medidas empecé yo y mí equipó con medir los instrumentos de cristalería con la balanza granataría pesamos cada uno de ellos:
Vidrio De Reloj: 14.3 gr.
Vaso De Precipitado De 500ml: 123 gr.
Vaso De Precipitado de 50ml: 25 gr.
Probeta Volumétrica: 112 gr.
Cristalizador: 54 gr.
Portaobjetos: 5.1 gr.
Pipeta Pauster: 1.5 gr.
Pipeta Volumetrica De 5 ml: 19.6 gr.
Tapón: 0.6 gr.
Cubreobjetos: 0.3 gr.
Espátula: 52.6 gr.
Pipeta Pauster Con Tapón: 4.2 gr.
Después de pesar los instrumentos con la balanza los pesamos de nuevo pero con agua corriente y con agua destilada:
Probeta Volumétrica: 117.3 gr de agua corriente de 5 ml.
Vidrio De Reloj: 16.2 gr agua corriente le aplicamos 1 ml.
Vaso De Precipitado De 500ml: 598.5 gr. con agua corriente
Vaso De Precipitado de 50ml: 59.8 gr. Con agua corriente
Tubo De Ensayo: 5 ml. Con agua destilada
Tubo De Ensayo: 7.2ml. Con agua corriente
Vidrio De Reloj: 16.3 gr. Con agua corriente
Después de esto no nos dio más tiempo en pesar los instrumentos con sal y harina solo medimos 2.
Vidrio De Reloj: 16.9 gr de sal
Cristalizador: 62.8 gr de sal.
CONCLUCION
Llegue ala conclusión que cuando peso los materiales con agua corriente y destilada no tienen el mismo peso que tienen solo y que al pesarlos con agua destilada disminuya su peso y con agua corriente aumenta.
También que cuando pese los instrumentos de cristalería con sal pesan mas que con la azúcar.
FOTOS DE LA MESA
PRACTICA 2
PESOS Y MEDIDAS
MESA:
3
Alumna:
Flores Hernández Cynthia Giselle
Maestro:
Víctor Manuel Alfaro López
Grupo:
2L2M
Materia:
Operar Equipo Y Material Del Laboratorio
Fecha:
24 De Marzo Del 2009
INDICE
1 Introducción
2 Objetivo
3 Instrucciones
4 Materiales
5 Desarrollo
6 Conclusión
INTRODUCCION
Esta práctica nos sirvió para poder manejar las medidas de los instrumentos como la balanza todo esto nos ayudo a saber cómo utilizar los milímetros de una pipeta pauster todo esto nos ayudo a mejorar nuestro desempeño como técnicos laboratoristas de la escuela y por eso en la 2 practica de pesos y medidas de los múltiplos y submúltiplos.
En esta práctica haremos las mediciones de los instrumentos de cristalería en la balanza de nuevo los mediremos pero con agua corriente el agua destilada por ultimo las pesamos con el cultivo que es sal y harina para saber que tanto subió en gramos
OBJETIVO
Aplicamos esta práctica para saber el volumen o peso de cada material de cristalería que el maestro nos presto ya sea con algún cultivo como el que manejamos sal y harina o solo.
Esta práctica nos ayudo a mejorar mejor las medidas de los instrumentos como la balanza y otros más. Ya sea que utilicemos mililitros, gramos, micro litros y etc.
INSTRUCCIONES
1 Materiales
2 Equipo de bioseguridad
3 Procedimiento: peso de materiales (masa):con una balanza gran ataría, realiza en el salón en el peso de los materiales que se facilitan, registrando el peso de cada elemento en forma ordenada. Solicitar agua destilada
4 Medicino de líquidos con pipetas: se debe de solicitar
5 tubos de ensayos pero solo nos dieron 2, 1 tapón para la pipeta de pauster, introducir la punta de la pipeta en el vaso de precipitado que contiene el liquido.
5 Succione hasta que el líquido hacienda hasta arriba de la marca superior solicitada.
6 Para verificar las gotas correspondientes a 1 ml. Debe utilizar una pipeta pastear.
7 Solicitar un vidrio de reloj para llevar a cabo el peso de 1 ml. De agua destilada y compáralo con la de agua corriente.
8 Realizar la succión del pipeteo con la boca si es agua.
9 Controle la descarga del liquido en el interior de la pipeta con el dedo observar la posición del menisco que se forma para saber si ya está la cantidad exacta.
10 Realizar 5 determinaciones con pipetas de diferentes capacidades. Lave los instrumentos y enjuague con agua corriente y destilada y colocarla en 1 gradilla.
11 guardas los instrumentos limpiarlos y limpiar la mesa y subir las sillas.
MATERIALES
1 Balanza Granataria
2 Vidrio De Reloj
3 Vaso De Precipitado De 500ml.
4 Vaso De Precipitado de 50ml.
5 Probeta Volumétrica
6 Cristalizador
7 Portaobjetos
8 Pipeta Pauster
9 Pipeta Volumetrica De 5 ml.
10 Tapón
11 Gradilla De Metal
12 Cubreobjetos
13 Espátula
14 Caja De Preti De Plástico
15 Tubo De Ensayo
DESARROLLO
En esta práctica numero 2 de pesos y medidas empecé yo y mí equipó con medir los instrumentos de cristalería con la balanza granataría pesamos cada uno de ellos:
Vidrio De Reloj: 14.3 gr.
Vaso De Precipitado De 500ml: 123 gr.
Vaso De Precipitado de 50ml: 25 gr.
Probeta Volumétrica: 112 gr.
Cristalizador: 54 gr.
Portaobjetos: 5.1 gr.
Pipeta Pauster: 1.5 gr.
Pipeta Volumetrica De 5 ml: 19.6 gr.
Tapón: 0.6 gr.
Cubreobjetos: 0.3 gr.
Espátula: 52.6 gr.
Pipeta Pauster Con Tapón: 4.2 gr.
Después de pesar los instrumentos con la balanza los pesamos de nuevo pero con agua corriente y con agua destilada:
Probeta Volumétrica: 117.3 gr de agua corriente de 5 ml.
Vidrio De Reloj: 16.2 gr agua corriente le aplicamos 1 ml.
Vaso De Precipitado De 500ml: 598.5 gr. con agua corriente
Vaso De Precipitado de 50ml: 59.8 gr. Con agua corriente
Tubo De Ensayo: 5 ml. Con agua destilada
Tubo De Ensayo: 7.2ml. Con agua corriente
Vidrio De Reloj: 16.3 gr. Con agua corriente
Después de esto no nos dio más tiempo en pesar los instrumentos con sal y harina solo medimos 2.
Vidrio De Reloj: 16.9 gr de sal
Cristalizador: 62.8 gr de sal.
CONCLUCION
Llegue ala conclusión que cuando peso los materiales con agua corriente y destilada no tienen el mismo peso que tienen solo y que al pesarlos con agua destilada disminuya su peso y con agua corriente aumenta.
También que cuando pese los instrumentos de cristalería con sal pesan mas que con la azúcar.
FOTOS DE LA MESA
PRACTICA 3 PIPETEO UNIDAD 2
C.B.T.I.S. NO 155
PRACTICA 3
PIPETEO
Mesa:
3
Alumna:
Flores Hernández Cynthia Giselle
Maestro:
Víctor Manuel Alfaro López
Grupo:
2L2M
Materia:
Operar Equipo Y Material Del Laboratorio
Fecha:
De Marzo Del 2009
INDICE
1 Introducción
2 Objetivo
3 Instrucciones
4 Materiales
5 Desarrollo
6 Conclusiones
INTRODUCCION
En esta práctica lo que nos sirvió fue en mejorar las perfecciones de medidas de cómo utilizar las pipetas volumétricas y automáticas y cómo utilizar los mililitros y macor litros de los líquidos en esta práctica llamada pipeteo nos ayudo como equipo a como pipetear ya que cada una de mis compañeras de equipo pipetearon para saber cómo utilizar las pipetas y las medidas lo bueno de todo esto es que nadie se trago agua corriente aunque cuando estemos utilizando verdaderos cultivos de muestras nos dará asco si nos la tragamos …
OBJETIVO
El objetivo de esta práctica es de cómo utilizar muy bien las pipetas volumétricas y automáticas y también de medir muy bien lo que nos indicas sobre todo que tanto de vemos pipetear las sustancias pueden ser agua corriente, agua destilada, orina, sustancias y etc.
INSTRUCCIONES
PARTE 1
Materiales
Equipo De Bioseguridad
Procedimiento:
Succionar 19 ml de agua con la pipeta volumétrica
Colocamos el dedo meñique en la abertura de la pipeta ya obtenida la medición
La colocamos en la caja petric procurar acertar correctamente la medida
Para saber la medición solicitar un embudo y una probeta graduada de 25 ml
Luego colocar el embudo arriba de la probeta ya obtenida este paso introducir el agua de la caja pretic
Poner toda el agua de la caja petric
Luego verificar si son los 19 ml que nos indicaron
En el 2 procedimiento succionar de 1ml a 5 ml cortados en 5 tubos de ensayo por ejemplo; la primera succión de 1 ml en el primer tubo de ensayo luego succión 2ml y en el segundo tubo de ensayo y así sucesivamente.
Colocarlas en la gradilla de plástico
En el 3 procedimiento tratar de obtener 200 micro litros de una pipeta automática y colocarlas en el vidrio de reloj.
PARTE 2
•Tomar una pipeta para verificar la cantidad que se pueda medir o cargar, se deposita en la probeta graduada para poder medir el liquido que se está ocupando.
•Se toma cada uno de las pipetas que se trabajan hasta donde el menisco marque la graduación de la pipeta y se trabaja cada uno de los tubos de ensaye colocando 1, 2, 3, 4, 5 mililitros por separado.
•Con la pipeta de Thomas se verificara el liquido que esta puede contener en micro otros, para ello se ocupa la manguera con boquilla, succionar el liquido utilizando pipeta de salí y registrar cada uno de las actividades que se realicen en la mesa.
•Se realiza punteo en gotas en la lamina de cristal
MATERIALES
PARTE 1
Tubo De Ensayo
Pipetas Volumétricas De 10, 5 Y 100 ml
Pipeta Pauster
Caja Petric
Vidrio De Reloj
Cristalizador
Probeta Graduada De 100ml. Y 25ml.
Placa De Cristal
Gradilla De Plástico
Tapón
Pipeta Automática
Vaso De Precipitación De 100ml.
PARTE 2
Pipeta automática volumétrica
Gradilla de metal
Tubos de ensaya
Pipeta de Thomas
Vaso precipitado 500ml.
Pipeta Pasteur (2)
Probeta graduada 100ml.
Placa de cristal ex carada
Manguera con boquilla
Pipeta volumétrica 5ml.
Pipeta graduada 10ml.
Pipeta milimétrica 10ml.
Pipeta graduada 5ml.
Cristalizador
Pipeta de salí
DESARROLLO
En la práctica numero 3 lo que hicimos fue de cómo pipetear con las pipetas volumétricas 19 mililitros de agua corriente al principio cuando el maestro nos dio las instrucciones de la practica nos pusimos de acuerdo de lo que teníamos que hacer yo fui la que absorbió el agua con la pipeta de 10 mililitro me fije el número correcto y la vacié en la caja petric de plástico me di cuenta que solo eran 10 y que me faltaban 9 así que lo hice de nuevo ya que al fin terminamos decidimos llamar al maestro para que verificara si esta práctica estaba bien de la forma que el maestro verifico si la practica estaba bien pues lo que hizo fue que consiguió un embudo y una probeta graduada de 25 mililitros coloco el embudo sobre la probeta y puso el agua de la caja pretic en embudo en lo cual la probeta estaba llevándose hasta el punto 19 lamentablemente nos pasamos pusimos de más 21 mililitros así que tuvimos que retirar agua corriente lo que yo retire al fin lo logramos conseguir la medida exacta de 19 mililitros ya que terminamos este paso comenzamos con el 2.
En el 2 paso lo que hicimos fue pipetear con la pipeta de 5 mililitros absorbiendo el agua corriente empezamos con 1 mililitro de agua y la colocamos en el tubo de ensayo luego fuimos con 2 mililitros de agua y la colocamos en el segundo tubo de ensayo seguimos si hasta lograr los 5 litros en los 5 tubos de ensayo.
Ya que terminamos el 2 paso fuimos con el 3 y el ultimo es poner 2oo micro litros con una pipeta automática en el reloj de vidrio tardamos mucho en usar la pipeta y poner los 200 micro litros pero terminamos al fin y guardamos los instrumentos,
limpiamos la mesa, levantamos los bancos y nos retiramos del laboratorio.
PARTE 2
Tomar una pipeta para verificar la cantidad de volumen que se puede medir o cargar, se deposita en la probeta graduada para poder medir el líquido que se está ocupando.
Tomamos una pipeta graduada de 5 ml. Pipeteamos con el dedo puesto (menique) y lo pusimos en la probeta graduada y nos marco 5ml.
Se toma cada una de las pipetas y se trabaja hasta donde el menique marque la graduación de la pipeta y la colocamos en cada uno de los tubos de ensaye marcando 1ml, 2ml, 3ml, 4ml, 5ml, por separado.
Con la pipeta de Thomas se verificaron el liquido que esta puede contener en micro litros, para ello se ocupa la manguera con boquilla. Cuando utilizamos la manquera con boquilla succione el liquido utilizando la pipeta de Salí y registrando cada una de las actividades que realice en la mesa. Se realizara punteo en gota en las láminas de cristal en pruebas inmunológicas.
CONCLUCION
Llegue ala conclusión de que ahora que seremos técnicos laboratoritos debemos aprender muchas cosas en eso está de cómo pipetear sustancias con las pipetas y acertar muy bien las medidas que nos indican sobre todo si son precisas.
Fotos de la mesa 3
PRACTICA 3
PIPETEO
Mesa:
3
Alumna:
Flores Hernández Cynthia Giselle
Maestro:
Víctor Manuel Alfaro López
Grupo:
2L2M
Materia:
Operar Equipo Y Material Del Laboratorio
Fecha:
De Marzo Del 2009
INDICE
1 Introducción
2 Objetivo
3 Instrucciones
4 Materiales
5 Desarrollo
6 Conclusiones
INTRODUCCION
En esta práctica lo que nos sirvió fue en mejorar las perfecciones de medidas de cómo utilizar las pipetas volumétricas y automáticas y cómo utilizar los mililitros y macor litros de los líquidos en esta práctica llamada pipeteo nos ayudo como equipo a como pipetear ya que cada una de mis compañeras de equipo pipetearon para saber cómo utilizar las pipetas y las medidas lo bueno de todo esto es que nadie se trago agua corriente aunque cuando estemos utilizando verdaderos cultivos de muestras nos dará asco si nos la tragamos …
OBJETIVO
El objetivo de esta práctica es de cómo utilizar muy bien las pipetas volumétricas y automáticas y también de medir muy bien lo que nos indicas sobre todo que tanto de vemos pipetear las sustancias pueden ser agua corriente, agua destilada, orina, sustancias y etc.
INSTRUCCIONES
PARTE 1
Materiales
Equipo De Bioseguridad
Procedimiento:
Succionar 19 ml de agua con la pipeta volumétrica
Colocamos el dedo meñique en la abertura de la pipeta ya obtenida la medición
La colocamos en la caja petric procurar acertar correctamente la medida
Para saber la medición solicitar un embudo y una probeta graduada de 25 ml
Luego colocar el embudo arriba de la probeta ya obtenida este paso introducir el agua de la caja pretic
Poner toda el agua de la caja petric
Luego verificar si son los 19 ml que nos indicaron
En el 2 procedimiento succionar de 1ml a 5 ml cortados en 5 tubos de ensayo por ejemplo; la primera succión de 1 ml en el primer tubo de ensayo luego succión 2ml y en el segundo tubo de ensayo y así sucesivamente.
Colocarlas en la gradilla de plástico
En el 3 procedimiento tratar de obtener 200 micro litros de una pipeta automática y colocarlas en el vidrio de reloj.
PARTE 2
•Tomar una pipeta para verificar la cantidad que se pueda medir o cargar, se deposita en la probeta graduada para poder medir el liquido que se está ocupando.
•Se toma cada uno de las pipetas que se trabajan hasta donde el menisco marque la graduación de la pipeta y se trabaja cada uno de los tubos de ensaye colocando 1, 2, 3, 4, 5 mililitros por separado.
•Con la pipeta de Thomas se verificara el liquido que esta puede contener en micro otros, para ello se ocupa la manguera con boquilla, succionar el liquido utilizando pipeta de salí y registrar cada uno de las actividades que se realicen en la mesa.
•Se realiza punteo en gotas en la lamina de cristal
MATERIALES
PARTE 1
Tubo De Ensayo
Pipetas Volumétricas De 10, 5 Y 100 ml
Pipeta Pauster
Caja Petric
Vidrio De Reloj
Cristalizador
Probeta Graduada De 100ml. Y 25ml.
Placa De Cristal
Gradilla De Plástico
Tapón
Pipeta Automática
Vaso De Precipitación De 100ml.
PARTE 2
Pipeta automática volumétrica
Gradilla de metal
Tubos de ensaya
Pipeta de Thomas
Vaso precipitado 500ml.
Pipeta Pasteur (2)
Probeta graduada 100ml.
Placa de cristal ex carada
Manguera con boquilla
Pipeta volumétrica 5ml.
Pipeta graduada 10ml.
Pipeta milimétrica 10ml.
Pipeta graduada 5ml.
Cristalizador
Pipeta de salí
DESARROLLO
En la práctica numero 3 lo que hicimos fue de cómo pipetear con las pipetas volumétricas 19 mililitros de agua corriente al principio cuando el maestro nos dio las instrucciones de la practica nos pusimos de acuerdo de lo que teníamos que hacer yo fui la que absorbió el agua con la pipeta de 10 mililitro me fije el número correcto y la vacié en la caja petric de plástico me di cuenta que solo eran 10 y que me faltaban 9 así que lo hice de nuevo ya que al fin terminamos decidimos llamar al maestro para que verificara si esta práctica estaba bien de la forma que el maestro verifico si la practica estaba bien pues lo que hizo fue que consiguió un embudo y una probeta graduada de 25 mililitros coloco el embudo sobre la probeta y puso el agua de la caja pretic en embudo en lo cual la probeta estaba llevándose hasta el punto 19 lamentablemente nos pasamos pusimos de más 21 mililitros así que tuvimos que retirar agua corriente lo que yo retire al fin lo logramos conseguir la medida exacta de 19 mililitros ya que terminamos este paso comenzamos con el 2.
En el 2 paso lo que hicimos fue pipetear con la pipeta de 5 mililitros absorbiendo el agua corriente empezamos con 1 mililitro de agua y la colocamos en el tubo de ensayo luego fuimos con 2 mililitros de agua y la colocamos en el segundo tubo de ensayo seguimos si hasta lograr los 5 litros en los 5 tubos de ensayo.
Ya que terminamos el 2 paso fuimos con el 3 y el ultimo es poner 2oo micro litros con una pipeta automática en el reloj de vidrio tardamos mucho en usar la pipeta y poner los 200 micro litros pero terminamos al fin y guardamos los instrumentos,
limpiamos la mesa, levantamos los bancos y nos retiramos del laboratorio.
PARTE 2
Tomar una pipeta para verificar la cantidad de volumen que se puede medir o cargar, se deposita en la probeta graduada para poder medir el líquido que se está ocupando.
Tomamos una pipeta graduada de 5 ml. Pipeteamos con el dedo puesto (menique) y lo pusimos en la probeta graduada y nos marco 5ml.
Se toma cada una de las pipetas y se trabaja hasta donde el menique marque la graduación de la pipeta y la colocamos en cada uno de los tubos de ensaye marcando 1ml, 2ml, 3ml, 4ml, 5ml, por separado.
Con la pipeta de Thomas se verificaron el liquido que esta puede contener en micro litros, para ello se ocupa la manguera con boquilla. Cuando utilizamos la manquera con boquilla succione el liquido utilizando la pipeta de Salí y registrando cada una de las actividades que realice en la mesa. Se realizara punteo en gota en las láminas de cristal en pruebas inmunológicas.
CONCLUCION
Llegue ala conclusión de que ahora que seremos técnicos laboratoritos debemos aprender muchas cosas en eso está de cómo pipetear sustancias con las pipetas y acertar muy bien las medidas que nos indican sobre todo si son precisas.
Fotos de la mesa 3
viernes, 20 de marzo de 2009
2 Unidad 1 moleculas inorganicas y organicas
2 Unidad
Molécula Orgánica
Las moléculas orgánicas pueden ser de dos tipos:
• Moléculas orgánicas naturales: Son las sintetizadas por los seres vivos, y se llaman biomoléculas, las cuales son estudiadas por la bioquímica.
• Moléculas orgánicas artificiales: Son sustancias que no existen en la naturaleza y han sido fabricadas por el hombre como los plásticos.
En los organismos se encuentran cuatro tipos diferentes de moléculas orgánicas en gran cantidad: carbohidratos, lípidos, proteínas y nucleótidos. Todas estas moléculas contienen carbono, hidrógeno y oxígeno. Además, las proteínas contienen nitrógeno y azufre, y los nucleótidos, así como algunos lípidos, contienen nitrógeno y fósforo. Se ha dicho que es suficiente reconocer cerca de 30 moléculas para tener un conocimiento que permita trabajar con la bioquímica de las células. Dos de esas moléculas son los azúcares glucosa y ribosa; otra, un lípido; otras veinte, los aminoácidos biológicamente importantes; y cinco las bases nitrogenadas, moléculas que contienen nitrógeno y son constituyentes claves de los nucleótidos. Entre los tipos principales de moléculas orgánicas importantes en los sistemas vivos están los carbohidratos, los lípidos, las proteínas y los nucleótidos.
Molécula Inorgánica
Las moléculas inorgánicas son aquellas que forman parte de la materia excepto en los seres vivos.
LA MOLECULA DEL AGUA
La molécula inorgánica del agua es una de las más importantes en la naturaleza. En un organismo vivo, representa desde un 50 a un 95% del peso total. En general, el agua está presente e interviene en todos los procesos metabólicos, como así también es un subproducto formado en una reacción química en el interior de un organismo.
Cabe mencionar que el agua es un factor ambiental de gran importancia, pues muchos organismos desarrollan su existencia en lugares como los mares, ríos, lagos charcas, etc.
Gracias a la característica polar de su molécula, el agua favorece la disociación de muchas otras moléculas, tanto orgánicas como inorgánicas. Esta propiedad de actuar como "solvente universal" y la tendencia de los átomos de ciertos compuestos a formar iones cuando están en solución, favorece un cometido importante: facilitar las reacciones químicas. El análisis mos¬tró que las moléculas inorgánicas consistían, por lo general. en un pequeño número de átomos diferentes en proporciones definidas. La molécula de agua contenía dos átomos de hidrógeno y uno de oxígeno; la molécula de sal contenía un átomo de sodio y uno de cloro; el ácido sulfúrico contenía dos átomos de hidrógeno. uno de azufre, y cuatro de oxígeno, etc.
Clasificación De Las Moléculas Orgánicas Que Se Ven Implantadas En El Organismo Humano
Las biomoléculas son las moléculas constituyentes de los seres vivos formadas por sólo cuatro elementos que son el hidrógeno, oxígeno, carbono, y nitrógeno, representando el 99 % de los átomos de los seres vivos.
Clasificación de las biomoléculas
Según la naturaleza química las biomoléculas pueden ser:
Biomoleculas inorgánicas: Agua, la biomolécula más abundante. Gases (oxígeno, dióxido de carbono). Sales inorgánicas: aniones como fosfato (HPO4), bicarbonato (HCO4-) y cationes como el amonio (NH4+).
Biomoléculas orgánicas o principios inmediatos: Glúcidos (glucosa, glucógeno, almidón). Lípidos (ácidos grasos, triglicéridos, colesterol, fosfolípidos, glucolípidos). Proteínas (enzimas, hormonas, hemoglobina, inmunoglobulinas etc.). Ácidos nucleicos (ADN ARN). Metabolitos (ácido pirúvico, ácido láctico, ácido cítrico, etc.)
Según el grado de complejidad estructural las biomoléculas pueden ser:
Precursoras: moléculas de peso bajo molecular, cono el agua (H2O), anhídrido carbónico (CO2) o el amoníaco (NH3).
Intermediarios metabólicos: moléculas como el oxaloacetato, piruvato o el citrato, que posteriormente se transforman en otros compuestos.
Unidades estructurales También llamadas unidades constitutivas de macromoléculas como los monosacáridos (en celulosa, almidón), aminoácidos (de las proteínas), nucleótidos (de los ácidos nucleicos), glicerol y ácidos grasos (en grasas).
Macromoléculas: de peso molecular alto como los ya citados almidón, glucógeno, proteínas, ácidos nucleicos, grasas, etc.
Los carbohidratos constituyen el 50 y 70% de los nutrientes en la dieta del hombre y la mayoría de los animales la oxidación que sufre los carbohidratos azucares y almidones mediante el oxigeno que se aceptan en la respiración, proporciona al cuerpo humano la energía que necesita para trabajar y mantener una temperatura de 37º C.
Los lípidos son sustancias constituyentes esenciales de prácticamente todas las células animales y vegetales son insolubles en aguas y solubles en éter químicamente los lípidos están formados por cinco elementos carbono, hidrógeno, oxigeno y a veces nitrógeno y fósforo.
Las grasas se almacenan en el cuerpo como materia de reserva pues se oxida cuando es necesario y producen energía. Entre los principales lípidos y grasas vegetales tenemos, el aceite de semilla de algodón, cacahuate, linaza y soya. Los principales lípidos o grasas de animal son la manteca de cerdo, el cebo de res y el de oveja y los aceites de pescado
Las enzimas son catalizadores orgánicos específicos, de naturaleza proteinita, producido por la célula vivas e indispensable para que las raciones químicas pueda efectuarse dentro de los organismos. Las enzimas son específicas, es decir, hay una enzima diferente para catalizar cada reacción. Según un principio general de biología cualquier enzima se compone de una coenzima o elemento activo y una apoenzima o elemento cortador
Las vitaminas como los compuestos orgánicos requeridos para el crecimiento normal y el sostenimiento de la vida de los animales, incluyendo al hombre. Propiamente no son alimento, puestos que no son utilizadas comunidades de construcción de las células, ni proveen energía, pero son factores esenciales para la regulación del metabolismo, y en pequeñas cantidades son capaces de provocar reacciones orgánicas muy profundas, actúan como agentes catalíticos.
Las proteínas son constituyentes esenciales del protoplasma y contiene nitrógeno la función principal de las proteínas es constituir y regenerar las células animales y vegétales también son constituyentes esenciales de la dieta necesaria para la síntesis de tejido corporal, enzimas, algunas hormonas y con ponentes proteínicos de la sangre. Las proteínas suelen clasificarse según su composición química o sus propiedades de solubilidad tres tipos
Principales, las proteínas simples se clasifican según su solubilidad, las proteínas conjugadas según sus grupos no proteínicos y las proteínas de rizadas según el método de alteración
Las hormonas no constituyen una especie química y solo puede clasificárseles tomando en cuenta el tipo de excitación que produce y la función que desempeña.
Entre las principales hormonas podemos funcionar las producidas por la hipófisis (hormonas del crecimiento del metabolismo de los lípidos, de los glúcidos, las gonadotrofinas que promueven la madures sexual, ).
El ácido de soxirribonucleico (ADN). Es el principal componente de los cromosomas combinados en proteínas llamados estonias y a veces portaminas. Ácido ribonucleico (ARN). Existen en el citoplasma de todas las células y es la que realiza las síntesis de proteínas por las células.
Bibliografías
http://es.wikipedia.org/wiki/Compuesto_org%C3%A1nico
http://iescarin.educa.aragon.es/depart/biogeo/varios/BiologiaCurtis/Seccion%201/1%20-%20Capitulo%203.htm
http://html.rincondelvago.com/biomoleculas-organicas.html
Molécula Orgánica
Las moléculas orgánicas pueden ser de dos tipos:
• Moléculas orgánicas naturales: Son las sintetizadas por los seres vivos, y se llaman biomoléculas, las cuales son estudiadas por la bioquímica.
• Moléculas orgánicas artificiales: Son sustancias que no existen en la naturaleza y han sido fabricadas por el hombre como los plásticos.
En los organismos se encuentran cuatro tipos diferentes de moléculas orgánicas en gran cantidad: carbohidratos, lípidos, proteínas y nucleótidos. Todas estas moléculas contienen carbono, hidrógeno y oxígeno. Además, las proteínas contienen nitrógeno y azufre, y los nucleótidos, así como algunos lípidos, contienen nitrógeno y fósforo. Se ha dicho que es suficiente reconocer cerca de 30 moléculas para tener un conocimiento que permita trabajar con la bioquímica de las células. Dos de esas moléculas son los azúcares glucosa y ribosa; otra, un lípido; otras veinte, los aminoácidos biológicamente importantes; y cinco las bases nitrogenadas, moléculas que contienen nitrógeno y son constituyentes claves de los nucleótidos. Entre los tipos principales de moléculas orgánicas importantes en los sistemas vivos están los carbohidratos, los lípidos, las proteínas y los nucleótidos.
Molécula Inorgánica
Las moléculas inorgánicas son aquellas que forman parte de la materia excepto en los seres vivos.
LA MOLECULA DEL AGUA
La molécula inorgánica del agua es una de las más importantes en la naturaleza. En un organismo vivo, representa desde un 50 a un 95% del peso total. En general, el agua está presente e interviene en todos los procesos metabólicos, como así también es un subproducto formado en una reacción química en el interior de un organismo.
Cabe mencionar que el agua es un factor ambiental de gran importancia, pues muchos organismos desarrollan su existencia en lugares como los mares, ríos, lagos charcas, etc.
Gracias a la característica polar de su molécula, el agua favorece la disociación de muchas otras moléculas, tanto orgánicas como inorgánicas. Esta propiedad de actuar como "solvente universal" y la tendencia de los átomos de ciertos compuestos a formar iones cuando están en solución, favorece un cometido importante: facilitar las reacciones químicas. El análisis mos¬tró que las moléculas inorgánicas consistían, por lo general. en un pequeño número de átomos diferentes en proporciones definidas. La molécula de agua contenía dos átomos de hidrógeno y uno de oxígeno; la molécula de sal contenía un átomo de sodio y uno de cloro; el ácido sulfúrico contenía dos átomos de hidrógeno. uno de azufre, y cuatro de oxígeno, etc.
Clasificación De Las Moléculas Orgánicas Que Se Ven Implantadas En El Organismo Humano
Las biomoléculas son las moléculas constituyentes de los seres vivos formadas por sólo cuatro elementos que son el hidrógeno, oxígeno, carbono, y nitrógeno, representando el 99 % de los átomos de los seres vivos.
Clasificación de las biomoléculas
Según la naturaleza química las biomoléculas pueden ser:
Biomoleculas inorgánicas: Agua, la biomolécula más abundante. Gases (oxígeno, dióxido de carbono). Sales inorgánicas: aniones como fosfato (HPO4), bicarbonato (HCO4-) y cationes como el amonio (NH4+).
Biomoléculas orgánicas o principios inmediatos: Glúcidos (glucosa, glucógeno, almidón). Lípidos (ácidos grasos, triglicéridos, colesterol, fosfolípidos, glucolípidos). Proteínas (enzimas, hormonas, hemoglobina, inmunoglobulinas etc.). Ácidos nucleicos (ADN ARN). Metabolitos (ácido pirúvico, ácido láctico, ácido cítrico, etc.)
Según el grado de complejidad estructural las biomoléculas pueden ser:
Precursoras: moléculas de peso bajo molecular, cono el agua (H2O), anhídrido carbónico (CO2) o el amoníaco (NH3).
Intermediarios metabólicos: moléculas como el oxaloacetato, piruvato o el citrato, que posteriormente se transforman en otros compuestos.
Unidades estructurales También llamadas unidades constitutivas de macromoléculas como los monosacáridos (en celulosa, almidón), aminoácidos (de las proteínas), nucleótidos (de los ácidos nucleicos), glicerol y ácidos grasos (en grasas).
Macromoléculas: de peso molecular alto como los ya citados almidón, glucógeno, proteínas, ácidos nucleicos, grasas, etc.
Los carbohidratos constituyen el 50 y 70% de los nutrientes en la dieta del hombre y la mayoría de los animales la oxidación que sufre los carbohidratos azucares y almidones mediante el oxigeno que se aceptan en la respiración, proporciona al cuerpo humano la energía que necesita para trabajar y mantener una temperatura de 37º C.
Los lípidos son sustancias constituyentes esenciales de prácticamente todas las células animales y vegetales son insolubles en aguas y solubles en éter químicamente los lípidos están formados por cinco elementos carbono, hidrógeno, oxigeno y a veces nitrógeno y fósforo.
Las grasas se almacenan en el cuerpo como materia de reserva pues se oxida cuando es necesario y producen energía. Entre los principales lípidos y grasas vegetales tenemos, el aceite de semilla de algodón, cacahuate, linaza y soya. Los principales lípidos o grasas de animal son la manteca de cerdo, el cebo de res y el de oveja y los aceites de pescado
Las enzimas son catalizadores orgánicos específicos, de naturaleza proteinita, producido por la célula vivas e indispensable para que las raciones químicas pueda efectuarse dentro de los organismos. Las enzimas son específicas, es decir, hay una enzima diferente para catalizar cada reacción. Según un principio general de biología cualquier enzima se compone de una coenzima o elemento activo y una apoenzima o elemento cortador
Las vitaminas como los compuestos orgánicos requeridos para el crecimiento normal y el sostenimiento de la vida de los animales, incluyendo al hombre. Propiamente no son alimento, puestos que no son utilizadas comunidades de construcción de las células, ni proveen energía, pero son factores esenciales para la regulación del metabolismo, y en pequeñas cantidades son capaces de provocar reacciones orgánicas muy profundas, actúan como agentes catalíticos.
Las proteínas son constituyentes esenciales del protoplasma y contiene nitrógeno la función principal de las proteínas es constituir y regenerar las células animales y vegétales también son constituyentes esenciales de la dieta necesaria para la síntesis de tejido corporal, enzimas, algunas hormonas y con ponentes proteínicos de la sangre. Las proteínas suelen clasificarse según su composición química o sus propiedades de solubilidad tres tipos
Principales, las proteínas simples se clasifican según su solubilidad, las proteínas conjugadas según sus grupos no proteínicos y las proteínas de rizadas según el método de alteración
Las hormonas no constituyen una especie química y solo puede clasificárseles tomando en cuenta el tipo de excitación que produce y la función que desempeña.
Entre las principales hormonas podemos funcionar las producidas por la hipófisis (hormonas del crecimiento del metabolismo de los lípidos, de los glúcidos, las gonadotrofinas que promueven la madures sexual, ).
El ácido de soxirribonucleico (ADN). Es el principal componente de los cromosomas combinados en proteínas llamados estonias y a veces portaminas. Ácido ribonucleico (ARN). Existen en el citoplasma de todas las células y es la que realiza las síntesis de proteínas por las células.
Bibliografías
http://es.wikipedia.org/wiki/Compuesto_org%C3%A1nico
http://iescarin.educa.aragon.es/depart/biogeo/varios/BiologiaCurtis/Seccion%201/1%20-%20Capitulo%203.htm
http://html.rincondelvago.com/biomoleculas-organicas.html
2 unidad aprender a utilizar materiales para medicion
Unidad 2
Practica 1
Aprender A Utilizar Materiales Para Medicino
1 Materiales:
a) Pipetas de 50 y una pipeta volumétrica de 10 mililitros
b) Buretras
c) Probetas de 100 mililitros
c) Matraz elenmeyer 250 mililitros
d) Vaso precipitado 250 mililitros
e) Probeta
Lugar de trabajo
Laboratorio de análisis clínicos (químico)
2 Equipo de bioseguridad
Guantes, bata, gorro y cubrebocas.
Lápiz, hojas, borrador y plumones o bicolores de madera o colores.
3 Procedimiento
Peso de materiales (masa): el alumno debe de solicitar una balanza remataria para realizar el peso de los materiales que se le facilita, registrando el peso de cada elemento en forma ordenada además debe registrar de alfa medico con letras o números, además de registrar la capacidad en volumen de cada elemento.
Debe de solicitar agua destilada para realizar sus trabajos utilizando el vaso precipitado de 250 en una cantidad de 200 mililitros de agua.
4 El alumno debe utilizar su habilidad y destreza para poder llevar a cabo esta actividad de peso y medida donde puede tener margen de error en el manejo de la sustancia contra los pesos y medidas que deben utilizar.
5 Medicino de liquides con pipetas: en esta actividad debe de solicitar 5 tubos de ensayo, una perilla de hule tapón de tubos de ensayo, y tela o tape masquintape.
6 Introducir la punta de la pipeta en el vaso de precipitación que contenga líquido.
7 Succione hasta que el liquido hacienda hasta arriba en la marca superior solicitada la cual será de un mililitro, 2 mililitros, 3 mililitros, 4 mililitros, 5 mililitros.
8 Para poder verificar las gotas correspondientes debe utilizar una pipeta pauster con embolo o globo de plástico para succionar manejando un mililitro de agua para hacer el corto en gotas o punteo, debe de solicitar un gotero.
9 Solicitar un vidrio de reloj para llevar a cabo el peso de un mililitro de agua destilada y compararla con un mililitro de agua corriente.
10 La succión del pipeteo la puede realizar por la boca si es agua y si es liquido correctivo se debe realizar con perrillas de hule y si es una pipeta como la de sally o pipeta de toma se debe de solicitar una manguera especial para estas pipetas.
11 Controle la descarga del líquido en el interior de la pipeta con el lado.
12 Para saber si ya está la cantidad exacta observe la posición del meñisco que se forma.
13 Realice 5 determinaciones con pipetas de diferentes capacidad para comparar los resultados vacié el contenido de la pipeta en una probeta que tenga capacidad que recibí el liquido que contenga la pipeta.
14 Lave de la pipeta y enjuague con agua destilada, coloque la pipeta en una gradilla o en un vaso precipitado de 500 mililitros.
15 Antes de usar una pipeta se debe de observar cuidadosamente y entender los marcos de equilibracion y capacidad de la pipeta.
miércoles, 18 de marzo de 2009
2 UNIDAD
C.B.T.I.S. No.155
2 UNIDAD
Materia:
Operar Equipo Y Material De Laboratorio
Profesor:
Víctor Manuel Alfaro López
Alumna:
Flores Hernández Cynthia Giselle
Grupo:
2L2M
2 UNIDAD
Preparar Reactivos
2.1 Preparar Soluciones
a) Porcentuales
b) Normales
c) Mólales
d) Molares
Dentro de la estrategia didáctica se va a utilizar los materiales de vidrio y volumétricos del laboratorio químico.
Investigar los diferentes procesos de preparación de soluciones para su uso en el laboratorio químico.
Resolver problemas de preparación de soluciones, normales, porcentuales, mólales, molares y otras para poder llegar a estos puntos debemos realizar estos productos.
Dentro de los materiales del laboratorio posible utilizar, deben de llevar una forma de prevención en el mantenimiento y expansionar correctivo o impersacionar de los laboratorios a utilizar, es decir materiales científicos que se utilicen.
El alumno debe llevar a cabo los trabajos de investigación de los conceptos ya indicados (porcentuales, normales, mólales y morales)
Práctica 1
Medición Y Pesos De Masa Y Volumen
Estructura
1 Portada
2 Objetivo particular del alumno
3 Introducción
4 Índice
5 Instrucciones
6 Desarrollo
De la practica en el laboratorio, este pinto debe tener gráficos reales de la actividad que se esté llevando a cabo y se deben de anotar en orden alfabético o numérico.
Si se realiza operaciones matemáticas que deben de cuadrar ordenadamente.
Dentro de los gráficos pueden ser fotos, dibujos alusivos al tema que se está realizando.
Cada uno de los materiales realizados o utilizados ya sea cristalería, equipo de apoyo y científico debe llevar su pie de foto y característica de uso o de mantenimiento
7 Hoja de mantenimiento preventido o correctivo
Esta debe ser cuadricular elaborada a criterio de los integrantes del laboratorio.
8 Conclusión de la práctica
Investigación del tema que se está realizando en forma breve
9 Fichas bibliográficas
Borrador para firma y subirlo al blog se renombra se deja el nombre del dominio y se etiqueta.
2 UNIDAD
Materia:
Operar Equipo Y Material De Laboratorio
Profesor:
Víctor Manuel Alfaro López
Alumna:
Flores Hernández Cynthia Giselle
Grupo:
2L2M
2 UNIDAD
Preparar Reactivos
2.1 Preparar Soluciones
a) Porcentuales
b) Normales
c) Mólales
d) Molares
Dentro de la estrategia didáctica se va a utilizar los materiales de vidrio y volumétricos del laboratorio químico.
Investigar los diferentes procesos de preparación de soluciones para su uso en el laboratorio químico.
Resolver problemas de preparación de soluciones, normales, porcentuales, mólales, molares y otras para poder llegar a estos puntos debemos realizar estos productos.
Dentro de los materiales del laboratorio posible utilizar, deben de llevar una forma de prevención en el mantenimiento y expansionar correctivo o impersacionar de los laboratorios a utilizar, es decir materiales científicos que se utilicen.
El alumno debe llevar a cabo los trabajos de investigación de los conceptos ya indicados (porcentuales, normales, mólales y morales)
Práctica 1
Medición Y Pesos De Masa Y Volumen
Estructura
1 Portada
2 Objetivo particular del alumno
3 Introducción
4 Índice
5 Instrucciones
6 Desarrollo
De la practica en el laboratorio, este pinto debe tener gráficos reales de la actividad que se esté llevando a cabo y se deben de anotar en orden alfabético o numérico.
Si se realiza operaciones matemáticas que deben de cuadrar ordenadamente.
Dentro de los gráficos pueden ser fotos, dibujos alusivos al tema que se está realizando.
Cada uno de los materiales realizados o utilizados ya sea cristalería, equipo de apoyo y científico debe llevar su pie de foto y característica de uso o de mantenimiento
7 Hoja de mantenimiento preventido o correctivo
Esta debe ser cuadricular elaborada a criterio de los integrantes del laboratorio.
8 Conclusión de la práctica
Investigación del tema que se está realizando en forma breve
9 Fichas bibliográficas
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